Анотація
Експериментальне дослідження було проведено на 72 дорослих самцях лабораторних щурів лінії WAG, масою 180–200 г. Контролем для природного перебігу запалення слугували інтактні щури, а контролем для запалення на тлі введення дабігатрану етексилату – щури, яким вводили препарат без подальшого викликання хронічного запалення. Моделлю запалення було карагінанове вторинно хронічне асептичне запалення, яке викликалося шляхом внутрішньом’язового введення в ділянку правого стегна 10 мг λ-карагінану (Sigma, США), розчиненого в 1 мл ізотонічного розчину натрію хлориду. Дабігатрану етексилат вводили внутрішньошлунково через зонд у дозі 15 мг/кг/добу, розчиненим в 1 мл ізотонічного розчину натрію хлориду щодня протягом усього експерименту, який тривав 28 діб. Встановлено, що застосування блокатора тромбіну дабігатрану етексилату, в порівнянні з природним перебігом вторинно хронічного карагінанового запалення, сприяє залученню лейкоцитів на 14-ту добу, що приводить до більшої елімінації флогогену в цей період, а зменшення кількості лейкоцитів на 21-шу і 28-му доби в період хронізації запалення, що свідчить про зниження потреби в лейкоцитах у ці терміни. Тенденція збільшення кількості сегментоядерних нейтрофілів у 1,3 раза на 28-му добу запалення на тлі введення дабігатрану етексилату, в порівнянні з природним перебігом запалення, свідчить про менш виражену еміграцію лейкоцитів у вогнище у зв’язку зі зниженням інтенсивності хронічного запалення. Зменшення кількості паличкоядерних нейтрофілів у периферичній крові на 28-му добу може бути пов’язане зі зниженням їх еміграції у вогнище запалення. Достовірне зменшення кількості моноцитів у 1,62 рази (p<0,01) на 28-му добу свідчить про те, що застосування блокатора тромбіну дабігатрану етексилату знижує адгезію лейкоцитів і зменшує хронізацію запалення.
Ключові слова: запалення, лейкоцити, периферична кров, тромбін.
Посилання
Medzhitov R. Inflammation 2010: new adventures of an old flame. Cell. 2010;140(6):771-6. DOI: 10.1016/j.cell.2010.03.006. PMID: 20303867.
Ferrero-Miliani L, Nielsen OH, Andersen PS, Girardin SE. Chronic inflammation: importance of NOD2 and NALP3 in interleukin-1beta generation. Clin Exp Immunol. 2007;147(2):227-35. DOI: 10.1111/j.1365-2249.2006.03261.x. PMID: 17223962.
Nathan C, Ding A. Nonresolving inflammation. Cell. 2010;140(6):871-82. DOI: 10.1016/j.cell.2010.02.029. PMID: 20303877.
Zhou Y, Hong Y, Huang H. Triptolide Attenuates Inflammatory Response in Membranous Glomerulonephritis Rat via Downregulation of NF-kappaB Signaling Pathway. Kidney and Blood Press Res. 2016;41(6):901-10. DOI: 10.1159/000452591. PMID: 27871079.
Lawrence T. The nuclear factor NF-kappaB pathway in inflammation. Cold Spring Harb Perspect Biol. 2009;1(6):a001651. DOI: 10.1101/cshperspect.a001651. PMID: 20457564.
Stramer BM, Mori R, Martin P. The inflammation-fibrosis link? A Jekyll and Hyde role for blood cells during wound repair. J Invest Dermatol. 2007;127(5):1009-17. DOI: 10.1038/sj.jid.5700811. PMID: 17435786.
Van Linthout S, Miteva K, Tschope C. Crosstalk between fibroblasts and inflammatory cells. Cardiovasc Res. 2014;102(2):258-69. DOI: 10.1093/cvr/cvu062. PMID: 24728497.
Robb CT, Regan KH, Dorward DA, Rossi AG. Key mechanisms governing resolution of lung inflammation. Semin Immunopathol. 2016;38(4):425-48. DOI: 10.1007/s00281-016-0560-6. PMID: 27116944.
Nathan C. Neutrophils and immunity: challenges and opportunities. Nat Rev Immunol. 2006;6(3):173-82. DOI: 10.1038/nri1785. PMID: 16498448.
Jabbour HN, Sales KJ, Catalano RD, Norman JE. Inflammatory pathways in female reproductive health and disease. Reproduction. 2009;138(6):903-19. DOI: 10.1530/REP-09-0247. PMID: 19793840.
Fujiwara N, Kobayashi K. Macrophages in inflammation. Curr Drug Targets Inflamm Allergy. 2005;4(3):281-6. DOI: 10.2174/1568010054022024. PMID: 16101534.
Huang C, Sali A, Stevens RL. Regulation and function of mast cell proteases in inflammation. J Clin Immunol. 1998;18(3):169-83. DOI: 10.1023/a:1020574820797. PMID: 9624576.
Aggrey AA, Srivastava K, Ture S, Field DJ, Morrell CN. Platelet induction of the acute-phase response is protective in murine experimental cerebral malaria. J Immunol. 2013;190(9):4685-91. DOI: 10.4049/jimmunol.1202672. PMID: 23536632.
Headland SE, Norling LV. The resolution of inflammation: Principles and challenges. Semin Immunol. 2015;27(3):149-60. DOI: 10.1016/j.smim.2015.03.014. PMID: 25911383.
Reville K, Crean JK, Vivers S, Dransfield I, Godson C. Lipoxin A4 redistributes myosin IIA, Cdc42 in macrophages: implications for phagocytosis of apoptotic leukocytes. J Immunol. 2006;176(3):1878-88. DOI: 10.4049/jimmunol.176.3.1878. PMID: 16424219.
Serhan CN, Savill J. Resolution of inflammation: the beginning programs the end. Nat Immunol. 2005;6(12):1191-7. DOI: 10.1038/ni1276. PMID: 16369558. Link?
Lintermans LL, Stegeman CA, Heeringa P, Abdulahad WH. T cells in vascular inflammatory diseases. Front Immunol. 2014;5:504. DOI: 10.3389/fimmu.2014.00504. PMID: 25352848.
Sugimoto MA, Sousa LP, Pinho V, Perretti M, Teixeira MM. Resolution of Inflammation: What Controls Its Onset? Front Immunol. 2016;7:160. DOI: 10.3389/fimmu.2016.00160. PMID: 27199985.
Radhakrishnan R, Moore SA, Sluka KA. Unilateral carrageenan injection into muscle or joint induces chronic bilateral hyperalgesia in rats. Pain. 2003;104(3):567-77. DOI: 10.1016/S0304-3959(03)00114-3. PMID: 12927629.
Dittmeier M, Wassmuth K, Schuhmann MK, Kraft P, Kleinschnitz C, Fluri F. Dabigatran Etexilate Reduces Thrombin-Induced Inflammation and Thrombus Formation in Experimental Ischemic Stroke. Curr Neurovasc Res. 2016;13(3):199-206. DOI: 10.2174/1567202613666160517122605. PMID: 27184031.
Durmaz S, Kurtoglu T, Rahman OF, Tataroglu C, Yılmaz M, Barbarus E, Erkan MH. Direct oral anticoagulant agents attenuate temporary aortic occlusion-induced renal oxidative and inflammatory responses in rats. Turk Gogus Kalp Damar Cerrahisi Derg. 2022;30(2):184-91. DOI: 10.5606/tgkdc.dergisi.2022.22831. PMID: 36168569.
Vogler GA. Anesthesia and Analgesia. Chapter 19. In: Suckow MA, Weisbroth SH, Franklin CL. (eds.). The Laboratory Rat. Second Edition. Burlington: Academic Press; 2006. P. 627-64. DOI: 10.1016/B978-012074903-4/50022-4.
Abdi-Azar H, Abbasi-Maleki S. Comparison of the anesthesia with thiopental sodium alone and their combination with Citrus aurantium L. (Rutaseae) essential oil in male rat. Bull Env Pharmacol Life Sci. 2014;3(Spl Issue V):37-44. Available at: https://bepls.com/spl_v_2014/8.pdf
Mishra P, Singh U, Pandey CM, Mishra P, Pandey G. Application of Student's t-test, analysis of variance, and covariance. Ann Card Anaesth. 2019;22(4):407-11. DOI: 10.4103/aca.ACA_94_19. PMID: 31621677.
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.